A. EGFR-T790M 及 EGFR-T790T条形码的示意图;
B. 引物的特异性;
C. 吉非替尼条件下EGFR-T790M与EGFR-T790T条形码比值的平均值;
D. 含有条形码的PC9细胞经不同浓度的吉非替尼处理4天;
E. 吉非替尼和/或WZ4002对条形码比值的影响;
F. 吉非替尼对条形码比值的影响;
G. WZ4002对条形码比值的影响;
H. 研究PC9细胞侵袭性的示意图;
I. 趋化小室膜两侧条形码的定量PCR分析。
复杂CRISPR-条形码的体内及体外研究
研究人员将染色体重排后的EML4-ALK片段整合到PC9细胞特定的基因位点中,如图2 A所示,吉非替尼的处理能诱导EML4-ALK细胞的富集,因此染色体重排可能代表一种全新的EGFR抑制剂的耐药性机理。
研究人员将上述含有EGFR,KRAS和EML4-ALK突变的PC9细胞混合(即PC9-EKE)(图2 B)。吉非替尼处理能够提高含有条形码的细胞占比(图2 C),因此这种复杂模型适用于联合用药的评价。如图2 D所示,尽管WZ4002和ALK抑制剂TAE684能有效防止T790M突变及EML4-ALK融合所赋予细胞的对吉非替尼的耐药性,但这些药物对KRAS突变赋予细胞的耐药性均无作用。这一结果证明,长期而言针对单一耐药性机制所采取的措施是低效的。
研究人员检测了曲美替尼(MEK抑制剂)的治疗效果,如图2 E所示,曲美替尼联合吉非替尼能够阻断所有吉非替尼抗性亚型的生长,这一结果证明了不同机制药物的联合使用能够防止或延缓非小细胞肺癌耐药性的出现。
为阐明该复杂系统在体内研究的应用,将PC9-EKE细胞注射到免疫功能低下的小鼠体内,在吉非替尼的作用下,肿瘤的生长在初期受到了抑制,但在数周之后又恢复了生长(图3 A)。图3 B显示,含PC9-EKE细胞的占比均显著上升,但存在个体差异。这一结果表明,肿瘤耐药性的选择可能是由携带不同突变信息的癌细胞亚型之间的竞争所导致。
图2 非小细胞肺癌对EGFR抑制剂耐药性的复杂模型
A. 吉非替尼条件下,含有EML4-ALK条形码细胞占比;
B. PC9细胞中复杂CRISPR-条形码的体内及体外模型;
C. 吉非替尼对PC9-EKE细胞的影响;
D. 吉非替尼联合WZ4002及TAE684对PC9-EKE细胞的影响;
E. 吉非替尼联合曲美替尼对PC9-EKE细胞的影响。
图3 非小细胞肺癌细胞对吉非替尼的体内耐药性
A.将PC9细胞注入SCID小鼠,用吉非替尼处理小鼠,测量肿瘤大小;
B.EML4-ALK,KRAS-G12D和 EGFR-T790M 条形码的含量。
使用高度复杂的CRISPR-条形码技术探索瘤内异质性
研究人员使用该技术在BT474和PC9细胞的19号染色体的腺相关病毒整合位点(AAVS1)处插入简并序列。BT474经体外培养和移植入免疫缺陷小鼠中培养,结果显示样品中条形码的分布是相似的,而且测序结果表明在吉非替尼的作用下,数百基因条形码产生了富集。PC9-EKE细胞中上调条形码的程度大于PC9细胞。以上结果证明,在治疗开始前耐药性突变亚型细胞就已经存在。
研究意义
CRISPR-条形码技术的一个重要优势在于其可以模拟具有基因异质性肿瘤亚型的复杂群体,并根据已知机理来评价复杂群体中基因突变对于耐药性的影响,因此该项技术成功地模拟了体内肿瘤的复杂环境。该技术是一种快速且高度灵活的多种基因突变检测技术,在体内外实现了其他方法无法实现的对肿瘤细胞亚型耐药性的检测。在条形码读取方面,定量PCR、深度测序、数字PCR及Taqman 探针均能用于定量分析,因此该技术使针对癌细胞亚型耐药性的化合物高通量筛选成为可能。